دوره 1، شماره 2 - ( 12-1400 )                   جلد 1 شماره 2 صفحات 22-13 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


دانشکده دامپزشکی ،گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، واحد کازرون، دانشگاه آزاد اسلامی، کازرون، ایران ، golchinalireza@yahoo.com
چکیده:   (1073 مشاهده)
استرپتوکوکوزیس یکی از بیماری های مهم و اقتصادی در صنعت آبزی پروری خصوصاً در ماهی قزل آلای رنگین کمان است و سالانه خسارات فراوانی را به این صنعت وارد می‌کند. از سوی دیگر این بیماری یکی از بیماری‌های مشترک میان انسان و ماهی بوده که می‌تواند منجر به بیماری در بین مصرف کنندگان ماهیان آلوده گردد. به منظور بررسی میزان ابتلاء ماهیان قزل آلای رنگین کمان مشکوک به بیماری استرپتوکوکوزیس در شهرستان یاسوج، تعداد 50 نمونه از ماهیان زنده دارای علائم بیماری شبیه به بیماری استرپتوکوکوزیس صید گردید و پس از کالبد گشایی از بافت‌های کلیه، کبد، طحال و مغز نمونه برداری باکتریایی برروی محیط کشت آگار خون دار(BA) انجام گرفت. نمونه برداری در مجاورت شعله و با وسایل استریل انجام گرفت. نمونه های اخذ شده به آزمایشگاه میکروبیولوژی دانشگاه آزاد اسلامی واحد کازرون انتقال یافت و داخل انکوباتور با درجه حرارت 25 درجه سانتی گراد به مدت 72 ساعت نگهداری گردید. پس از طی این مدت ابتدا با انجام رنگ آمیزی گرم و آزمایش کاتالاز نمونه‌های گرم منفی حذف شد و سپس آزمایشات بیوشیمیایی تکمیلی پس از کشت مجدد نمونه‌ها بر روی آنها انجام گرفت. نتایج حاصل نشان داد که نمونه‌های جدا شده از دو گونه استرپتوکوکوس اینیه و استرپتوکوکوس گارویه بودند. میزان ابتلا ماهیان دارای علائم بالینی به استرپتوکوکوس اینیه و استرپتوکوکوس گارویه به ترتیب 68 درصد و 25 درصد بود و 7 درصد موارد شناسایی نگردید. همچنین میزان جداسازی باکتری استرپتوکوکوس اینیه و استرپتوکوکوس گارویه از بافت های کلیه، مغز، طحال و کبد به ترتیب 60، 65، 58، 92 درصد و 26، 36، 32 و 6 درصد بود.
 
متن کامل [PDF 614 kb]   (253 دریافت) |   |   متن کامل (HTML)  (234 مشاهده)  
مرور کتاب: پژوهشی اصیل | موضوع مقاله: دامپزشکی
دریافت: 1400/12/8 | پذیرش: 1400/12/28 | انتشار: 1400/12/29

فهرست منابع
1. Nguyen HT, Kanai K, Yoshikoshi K. Ecological investigation of Streptococcus iniae in cultured Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) using selective isolation procedures. Journal of Aquaculture. 2002; 205: 7-17. [DOI:10.1016/S0044-8486(01)00667-6]
2. Nomoto R, Munasinghe LI, Jin DH, Shimahara Y, Yasuda H, Nakamura A, Misawa N, Itami T, Yoshida T. Lancefield group C Streptococcus dysgalactiae infection responsible for fish mortalities in Japan. Journal of Fish Disease. 2004; 27:679-686. [DOI:10.1111/j.1365-2761.2004.00591.x] [PMID]
3. Roach JCM, Levett PN, Lavoie MC. Identification of Streptococcus iniae by commercial bacterial identification systems. Journal of Microbiological Methods. 2006; 67:20-26. [DOI:10.1016/j.mimet.2006.02.012] [PMID]
4. Soltani M, Pirali E, Shayan P, Eckert B, Rouholahi S, Sadr SN. Development of a Reverse Line Blot Hybridization method for Detection of some Streptococcal/Lactococcal Species, the causative agents of Zoonotic Streptococosis/Lactococosis in farmed fish. Iranian Journal of Microbiology, 2012;4(2):70-74.
5. Kia ER, Mehrabi Y. Detection and Identification of Different Streptococcosis Strains in Farmed Rainbow Trout in Boyerahmad and Dena Regions (North South of Iran). World Journal of Fish and Marine Sciences. 2013;5(3):315-321.
6. Fadaeifard F, Raissy M, Momtaz H, Zahedi R. Detection of streptococcus iniae by polymerase chain reaction in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in West Iran. African Journal of Microbiology Research.2011; 5: 4722-4724. doi: 10.5897/AJMR11.674 [DOI:10.5897/AJMR11.674]
7. Figueiredo HCP, Nobrega Netto L, Leal CAG, Pereira UP, Mian GF. Streptococcus iniae outbreaks in Brazilian Nile tilapia (Oreochromis niloticus L) farms. Brazilian Journal of Microbiology. 2012;43: 576-580. doi: 10.1590/S1517-83822012000200019 [DOI:10.1590/S1517-83822012000200019] [PMID] [PMCID]
8. Türe M, Alp H. Identification of bacterial pathogens and determination of their antibacterial resistance profiles in some cultured fish in Turkey. Journal of Veterinary Research. 2016; 60: 141-146. doi: 10.1515/jvetres-2016-0020 [DOI:10.1515/jvetres-2016-0020]
9. Evans J, Klesius PH, Gilbert PM, Shoemaker CA, Alsarawi MA, Landsberg J, Duremdez R, Almarzouk A, Alzenki S. Characterization of beta-haemolytic group B streptococcus agalactiae in cultured sea bream, Sparus ouratus l. and wild mullet, Liza klunzingeri, in Kuwait. Journal of fish Disease. 2002; 25:505-513. [DOI:10.1046/j.1365-2761.2002.00392.x]
10. Eldar A, Perl S, Frelier PF, Bercovier H. Red drum Sciaenops ocellatus mortalities associated with Streptococcus iniae infection. Journal of Diseases of Aquatic Organisms. 1999; 36:121-127. [DOI:10.3354/dao036121] [PMID]
11. George TT. Canadian doctors confirm the infection and effects of Streptococcus iniae in fish and humans. Contributed-papers, Aquaculture. 1999 ;98(2): 87-89.
12. Kusuda R, Kawai T, Toyoshima T, Komatus I. A new pathogenic bacterium belonging to the genus Streptococcus, isolated from an epizootic of cultured yellowtail. Bulletin of the Japanese Society for the Science of Fish. 1976; 42:1345-1352. https://doi.org/10.2331/suisan.42.271 https://doi.org/10.2331/suisan.42.969 [DOI:10.2331/suisan.42.1345]
13. Eldar A, Ghittino C. Lactococcus garvieae and Streptococcus iniae infections in rainbow trout Oncorhynchus mykiss: similar, but different diseases. Journal of Diseases of Aquatic Organisms. 1999; 36:227-231 [DOI:10.3354/dao036227] [PMID]
14. Agnew W, Barnes AC. Streptococcus iniae: An aquatic pathogen of global veterinary significance and a challenging candidate for reliable vaccination. Journal of Veterinary Microbiology. 2007; 122:1-15. [DOI:10.1016/j.vetmic.2007.03.002] [PMID]
15. Sako H. Studies on Streptococcus iniae infection in yellowtail, Seriola quinqueradiata. Bulletin of Nansei National Fish Research Institute. 1998; 31: 36-120.
16. MacFaddin JF. Biochemical testes for identification of medical bacteria. Williams and Wilkins. 2000; p: 912.
17. Haghighi karsidani S, Soltani M, Nikbakhat-Brojeni G, Ghasemi M, Skall HF. Molecular epidemiology of zoonotic Streptococcosis/lactococcosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) aquaculture in Iran. Iranian journal of microbiology. 2010; 2(4):198-209.
18. Taheri Mirghaed A, Soltani M, Mahmoodi Z, Hosseini-shekarabi SP. Study of cultured rainbow trout contamination with Streptococcus iniae and Lactococcus garvieae in some fish markets of Tehran and Karaj. Food Hygiene. 2016; 6(1):1-10.
19. Feid M, Ramezani B. Bacterial evaluation of fish infected with streptococcosis and evaluation of their antibiotics resistance in rainbow trout breeding centers of Gilan. Journal of Aquaculture Development.2018; 12(2): 103-112.
20. Sepahdari A, Saeidi AA, Kakulaki SH, Habibi Kutenaei F, Zahedi tabarestani A, Babaalian AR. Prevalence of Streptococcus in rainbow trout in farms East of Mazandaran province (Haraz river basin). Caspian Aquatic Magazine. 2017;2(2): 32-41.
21. Klesius P, Evans J, Shoemaker C, Yeh H, Goodwin AE, Adams A, Thompson K. Rapid detection and identification of Streptococcus iniae using a monoclonal antibody-based indirect fluorescent antibody technique. Journal of Aquaculture. 2006; 258:180-186. [DOI:10.1016/j.aquaculture.2005.06.040]
22. Ndong D, Chen YY, Lin YH, Vaseeharan B, Chen JC. The immune response of tilapia Oreochromis mossambicus and its susceptibility to Streptococcus iniae under stress in low and high temperatures. Journal of Fish Shellfish Immunology. 2006; 22:686- 694. [DOI:10.1016/j.fsi.2006.08.015] [PMID]
23. Zarzuela RI, Bias I, Girones O, Ghittino C, MuAzquiz J. Isolation of Vagococcus salmoninarum in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Veterinary Research Communication. 2005; 29: 553-562. [DOI:10.1007/s11259-005-2493-8] [PMID]
24. Soltani M. Fish Bacterial Diseases (translation), First Edition, State Veterinary Organization Publication, in collaboration with Jihad Publishing House, Dept. of Agriculture, Tehran, Iran. 1996; 531 p.
25. Liao PC, Tsai YL, Chen YC, Wang PC, Liu SC, Chen SC. Analysis of Streptococcal infection and correlation with climatic factors in cultured tilapia Oreochromis spp. in Taiwan. Applied Sciences. 2020; 10(11): 4018. [DOI:10.3390/app10114018]
26. Austin B, Austin D. Bacterial Fish Pathogens. Disease of farmed and wild fish. Springer Press.2007; pp. 58-63.
27. Wang Y, Wang E, He Y, Wang K, Yang Q, Wang J, Geng Y, Chen D, Huang X, Ouyang P, Lai W, Shi C. Identification and screening of effective protective antigens for channel catfish against Streptococcus iniae. Oncotarget. 2017; 8(19): 30793-30804. [DOI:10.18632/oncotarget.16475] [PMID] [PMCID]
28. Russo R, Mitchell H, Yanong RPE. Characterization of Streptococcus iniae isolated from ornamental cyprinid fishes and development of challenge models. Aquaculture. 2006;256: 105-110. [DOI:10.1016/j.aquaculture.2006.02.046]
29. Gauthier DT. Bacterial zoonoses of fishes: A review and appraisal of evidence for linkages between fish and human infections, The Veterinary Journal. 2015; 203: 27-35. [DOI:10.1016/j.tvjl.2014.10.028] [PMID]
30. Haenen OLM, Evans JJ, Berthe F. Bacterial infections from aquatic species: potential for and prevention of contact zoonoses. Revue Scientifique Et Technique. Off. int. Epiz. 2013; 32(2): 497-507. [DOI:10.20506/rst.32.2.2245] [PMID]
31. Fox JG, Otto G, Colby LA. Chapter 28-Selected Zoonoses. Laboratory Animal Medicine (Third Edition). 2015; pp:1313-1370. [DOI:10.1016/B978-0-12-409527-4.00028-6] [PMCID]
32. Jose J, Fefer, KR, Ratzan SE, Enma S. Lactococcus garvieae Endocarditis: Report of a case and review of the literature. Diagnostic microbiology and infectious disease.1998; 32: 127-130. [DOI:10.1016/S0732-8893(98)00065-0]

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.